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小鼠源細胞操作流程
更新時間:2025-07-28   點(diǎn)擊(jī)次數:517次

1. 主要試劑(jì)與儀器:倒置相差顯微鏡(jìng)(日本 olympus imt-413),co2孵箱(日本yamato it-61)。

2. hek-293細胞的複蘇培養傳(chuán)代及凍(dòng)存

3. 細胞的複蘇培養 從液氮罐中取出凍存管,立即投入37℃水浴,並(bìng)不斷的搖動,使之迅速融化。 将溶解的細胞凍存管取出,用酒精消毒後打開,吸出溶有細胞的凍存液,加入事先裝好培養液(37℃預熱,8~10倍體積)離心管内,稍微吹打混勻,然後1000rpm 5min,去除上清,加入适量培養液,吹打成細胞懸液, 以1×105/ml密度接種於(yú)25cm2培養瓶内,在37℃、5%co2及飽和濕度下培養。


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4. 細胞傳代 原代培養的hek-293細胞48h換液1次,細胞長(zhǎng)至60%~70%融合時,用0.25%消化1~2min,将培養瓶再用手掌輕輕敲打使細胞脫壁、懸浮、分散,爲使細胞進一步分散可用吹打管輕輕吹打幾次,獲得細胞懸液,然後加入倍量的培養基,溫和混勻,吸管分裝混合液,傳(chuán)代擴增細胞。

5. 細胞形态的觀察 在倒置顯微鏡下觀察並(bìng)記錄細胞的生長(zhǎng)情況及形态特征。

6. 細胞的計數 常規消化細胞,待細胞變(biàn)圓、脫壁並(bìng)浮起,加入少量培養基離心,再用pbs重懸並(bìng)吹打制成細胞懸液。在細胞計數闆蓋玻片的一側(cè)加微量細胞懸液,用10×物鏡觀察計數闆四角大方格細胞數,按公式計算出細胞數。細胞數/ml原液=(四方格細胞數之和/4) ×104。

7. 細胞的貼壁率 指數生長期的細胞,以0.25%消化成單(dān)細胞懸液,計數後分别接種於(yú)12個25cm2培養瓶中,每兩小時随機取出3瓶細胞,吸除培養基及未貼壁細胞,加入胰消化酶消化、計數已貼壁細胞,取其平均值,按照公式:貼壁率(%)=(已貼壁細胞數/接種細胞數) ×100%,計算貼壁率。

8. 生長曲線 取指數生長(zhǎng)期的細胞用消化制成單(dān)細胞懸液,以1×104/孔接種於(yú)24孔闆,每孔加入1ml培養基。每天随機取3孔,計數每孔細胞的數目並(bìng)計算平均值。連續計數10d,繪制細胞生長曲線

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